牛病毒性腹泻病毒(BVDV)荧光PCR试剂盒

产品名称：

通用名称：牛病毒性腹泻病毒(BVDV)荧光PCR试剂盒

Name：Bovine Viral Diarrhea Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method) 50T/盒

包装规格：50T/盒

预期用途：

本试剂盒适用于检测的牛的肠粘膜、肠系膜淋巴结组织、排泄物等标本中牛病毒性腹泻病毒核酸，适用于牛病毒性腹泻病毒感染的辅助诊断。

检验原理：

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术，设计一对牛病毒性腹泻病毒特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光 PCR 技术对牛病毒性腹泻病毒的核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

试剂组成：

说明： 不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

保存条件及有效期：

-20℃±5℃ ，避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次，有效期 12 个月。

适用仪器：

ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

标本采集：

病死或扑杀牛，取肠粘膜、肠系膜淋巴结组织； 待检活牛，取排泄物，放入 1mL50%甘油生理盐水中。

保存和运输：

上述标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-70℃，但不能超过 6 个月，标本运送应采用 2~8℃冰袋运输， 严禁反复冻融。

使用方法：

1.样本处理（样本处理区）

样本前处理

A组织样品： 每份组织分别从 3 个不同的位置称取样品约 1g，手术/剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中，8000rpm 离心2min，取上清液 100μL于 1.5mL 灭菌离心管中； 咽拭/子样品直接取 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中。

B核酸提取

推荐采用公司生产的核酸提取/或纯化试剂（磁珠法或离心柱法） 进行核酸提取，请按照试剂说明书进行操

作。

2.试剂配置（试剂准备区）

根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照； 样品每满

10 份，多配制 1 份)，每测试反应体系配制如下表：

将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中，21μL/管。

3.加样（样本处理区）

将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL，分别加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀，

短暂离心。

4.PCR扩增（核酸扩增区）

4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内；

4.2 设置好通道、样品信息，反应体系设置为  25μL；

荧光通道选择：   检测通道（Reporter Dye）FAM， 淬灭通道（Quencher Dye）NONE，ABI 系列仪器请勿选择

ROX 参比荧光，选择None 即可。

4.3  推荐循环参数设置：

5.1结果分析条件设定

设置 Baseline 和 Threshold：一般直接按机器自动分析的结果分析，当曲线出现整体倾斜时，根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~ 15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节)，以及 Threshold 的Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照)，重新分析结果。

5.2结果判断

阳性： 检测通道 Ct 值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线；

可疑： 检测通道 35<Ct 值≤38，建议重复检测，如果检测通道仍为 35<Ct 值≤38 ，且曲线有明显的增长曲线， 判定为阳性，否则为阴性；

阴性： 样本检测结果Ct 值>38 或无 Ct 值。

6.质控标准

阴性质控品： Ct>38 或无 Ct 值显示；

阳性质控品： 扩增曲线有明显指数生长期，且 Ct 值≤32； 以上条件应同时满足，否则实验视为无效。

7.检测方法的局限性

1. 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关；

2. 样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果；

3.  阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果；

4. 病原体在流行过程中基因突变、重组，会导致假阴性结果；

5. 不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果；

6. 试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果；

7. 本检测结果仅供参考，如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

注意事项：

1. 所有操作严格按照说明书进行；

2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化，wan全混匀并短暂离心；

3. 反应液应避光保存；

4. 反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；

5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；

6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；

7. 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；

8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》 进行处理。